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Molecular Devices使用多能诱导干细胞(iPSC)来源的肝细胞球进行高内涵3D毒性分析

点击次数:639 发布时间:2017-05-09

 特点:

  • 使用人类多能诱导干细胞来源的肝细胞形成肝细胞球

  • 对体外筛选的3D模型进行肝毒性评价

  • 3D图像分析过程中对目标样品进行识别和分割,以达到zui佳分割效果

景介绍:

在发育生物学和组织生物学中,3D细胞球建模方式能够加快转化研究进程,因此越来越受到人们的重视。如何对3D样本进行更高通量的定量分析成为了热门研究课题。

在本实例中,MD公司建立并优化了一种分析方法,能够对人类多能诱导干细胞来源的3D肝细胞球进行共聚焦成像和毒性评估(图1)。

 

 

使用免洗色法进行肝毒性评价:

  1. 用肝毒性测试化合物处理细胞球72小时

  2. 用溶解于无菌PBS中的三种荧光染料对细胞球进行染色。三种染料的浓度分别为:

  • 2 μM calcein AM

  • 3 μM EthD-1

  • 10μM Hoechst 33342 (Life Technologies)

此外,为了评价化合物对凋亡信号的激活和对线粒体形态的影响,所用的染料浓度分别为:

  • 7.5 μM CellEvent Caspase 3/7

  • 200 nM MitoTracker Orange (Life Technologies)

肝细胞球的形成:

本实例使用的细胞为:

  • 人类多能诱导干细胞来源的肝细胞 iCell Hepatocytes 2.0 (Cellular Dynamics International)

  • HepG2细胞 (ATCC)

操作流程

  1. 按照标准操作流程将冻存细胞复苏;

  2. iCell Hepatocytes 2.0 铺板进行2D培养;

  3. 贴壁细胞用Accutase酶消化后与Geltrex 基质(ThermoFisher Scientific)混合,细胞混合液以1000 cells/well的密度种植在低吸附成球孔板中(InSphero or Corning);

  4. 将孔板以300 g转速离心2分钟使细胞沉淀并去掉基质中的气泡,然后将孔板放入细胞培养箱,在37°C, 5% CO2条件下进行培养。培养HepG2 细胞无需加入基质;

  5. 培养24–48小时后细胞球形成。

将染料加入细胞球培养体系中孵育2小时,然后采集图像。染料无需洗脱,加样过程小心谨慎,避免损伤细胞球进而造成细胞球解体或偏离原位。典型的细胞球染色结果如图 2所示。

高通量3D图像的采集和分析过程:

采用ImageXpress® Micro 共聚焦高内涵成像系统(Molecular Devices)采集图片,具体设置如下:

  • 物镜种类--10倍镜和20倍镜

  • 层扫间距--5-10μm

  • 层扫范围--100-120μm

  • 层扫起始位置--多孔板孔底

所有的结果中都包含有2D maximum投射图像,分析过程中可以对这些图像进行保存和调用。

识别并分析3D样品

使用MetaXpress® 高内涵图像采集分析软件对3D图像进行分析。CME用户模块编辑器中新增了3D分析模块(图3) ,该模块能够对3D结构的体积、荧光强度、距离等参数进行量化并对图像进行批量分析。其中 “Find Spherical Objects”功能可以对目标结构的形态学参数(zui小和目前较大宽度,zui小和目前较大Z轴层数)和目标结构与背景之间荧光强度的差值进行自定义设置,对不同大小的目标结构(小到细胞器,大到多细胞团)进行定义。比如将形态参数设定为:

  • 细胞核宽度范围--5-15 μm

  • 细胞核层数--1-2层

  • 细胞核与背景的荧光强度差--200 荧光单位

  • 肝细胞球宽度范围--100-300 μm

  • 肝细胞球层数--5-7层

  • 肝细胞球与背景的荧光强度差-- 400 荧光单位

分析结果包括每个目标结构的球体体积、直径(或平均体积、平均直径),以及特定荧光通道中球体的总荧光强度和平均荧光强度等参数。

“Find Spherical Objects”功能还可用于识别单个细胞和细胞核或利用适当的特征将不同的单细胞区别开来。此外,3D分析模块可以按照用户自定义选项“Connect by BestMatch”, “Connect byTouching”, 和 “Do NotConnect Objects”将不同层面的目标结构连接起来。

首先对Z轴层扫中的每层图片按照2D图片进行分割、分析并得到细胞核个数,细胞死/活和细胞分类等参数的测量值;其次利用用户定义的目标结构的目前较大范围将其连接起来。如:

  • 细胞核目前较大范围 3-6 μm

  • 细胞质目前较大范围 20-30 μm

zui终,在3D结构中将细胞核或单细胞分割出来。整个过程中目标结构不会丢失也不会被重复计数。所有的细胞(如:calceinAM 阳性/阴性细胞;Ethidium homodimer阳性/阴性细胞)都会被识别、被计数。

为了直观表现目标结构的整体/平均荧光强度、体积、直径、间距以及目标结构在三维空间中的定位等参数,可用不同颜色标记单个细胞。利用细胞球标记范围( spheroid masking )对更小的结构进行计数,这些结构可能在标记范围(mask)之中或在标记范围(mask)之外。如:对每孔只含有一个细胞球的样品进行分析时,利用单细胞标记( single-cell masking )可以对所有细胞进行计数并将位于细胞球中和细胞球外的细胞区别开来。当细胞球不完整时,这种图形处理方式就显得十分重要。对每孔含有多个细胞球的样品(细胞球与基质共培养)进行分析时,这种图形处理方式可以定义每个细胞球的容量并得出均值。

图 4A 显示了不同层面的2D图像中 calceinAM 阳性细胞的细胞分类结果。利用“Connect by Best Match” 功能可以将细胞在3D空间中连接起来。相同的方法可以分析 ethidium homodimer 阳性/阴性细胞(细胞死/活分析) 也可以分析线粒体、荧光强度、细胞凋亡还可以分析特定染料和标记物。

使用多参数表型筛选结果进行毒性评价

利用多种肝毒素处理细胞球,观察细胞球表型和细胞含量的显著变化。许多细胞球失去了球状结构,球体发生崩解,细胞球变得松散、扁平、不规则。细胞从主体结构中脱离,或出现凝结核,表明细胞已经死亡。 当化合物浓度超过一定范围,细胞表型就会出现上述变化 (图4B)。 利用图像量化分析得到的参数对细胞球的形态特征、细胞含量和结构复杂程度进行评估。检测细胞球体积、直径、荧光强度,同时检测calcein AM 阳性细胞(活细胞)、EthD-1 阳性细胞(死细胞)个数。细胞球经化合物处理后,细胞总数没有变化,死细胞数量上升,活细胞数量下降(具有浓度依赖特性);细胞球和单个细胞(细胞质)中calcein AM的平均荧光强度显著降低。

为进一步研究细胞毒性机制,我们对细胞的凋亡特征和线粒体完整性进行评估。化合物处理细胞球24小时后用caspase 3/7 荧光染料检测细胞凋亡的活化程度。 caspase 3/7 对细胞球(经甲基汞处理的对照组细胞球)的染色结果如图2B所示。用化合物处理细胞球后会诱导细胞凋亡,导致 caspase 3/7 荧光强度增加,caspase 3/7 阳性细胞(凋亡细胞)的个数增加。 用MitoTracker Orange 荧光染料染色结果来反映线粒体膜电位的变化情况。用化合物处理细胞球后会破坏线粒体结构的完整,进而导致MitoTracker Orange荧光强度降低(具有浓度依赖特性,图2C )

对活细胞个数、 calcein AM 荧光强度、 calceinAM 阳性细胞含量等参数进行测量后发现这些参数都的符合四参数剂量反应曲线模型(图 4B)。IC50 值 (表 2) 由SoftMax® Pro 6 软件(MolecularDevices)生成。

总结:

在对肝毒性进行评价的过程中,3D肝脏球模型+高内涵3D分析模式作为一种反应灵敏、可重复性高的方法,越来越展现出广阔的应用前景。该方法预测准确率相比于动物实验和临床数据仍需要继续完善。相关模型的进一步发展,检测方法的进一步优化有利于拓展该方法在体外筛选领域中的应用空间。

参考文献:

  1. Chang, T. T., & Hughes-Fulford, M. (2009).Monolayer and Spheroid Culture of Human Liver Hepatocellular Carcinoma Cell Line Cells Demonstrate Distinct Global Gene Expression Patterns and Functional Phenotypes. Tissue Engineering Part A, 15(3), 559-567.

  2. Hartung, T. (2009). Toxicology for the twentyfirst century. Nature, 460(7252), 208-212.

  3. Kunz-Schughart, L. A. (2004). The Use of 3-D Cultures for High-Throughput Screening:The Multicellular Spheroid Model. Journal of Biomolecular Screening, 9(4), 273-285.

  4. Lu, J., Einhorn, S., Venkatarangan, L., Miller, M., Mann, D. A., Watkins, P. B., & Lecluyse,E. (2015). Morphological and Functional Characterization and Assessment of iPSCDerived Hepatocytes for In Vitro Toxicity Testing. Toxicological Sciences, 147(1), 39-54.

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